Korištenje oksalne kiseline u kasnu jesen za bolju kontrolu grinja sljedeće godine

U procesu uzimljavanja pčela, s košnicama punim zaliha i zimskim pčelama zaštićenim prethodnim tretmanima protiv grinja, velike su šanse da ćete shvatiti da su pčele spremne za zimu. U tome biste bili u pravu – učinili ste sve što ste mogli za pčele koje su trenutno žive u košnicama – ali šta ste učinili da zaštitite pčele sljedeće godine od grinja?

Ljetni i jesenski tretmani protiv grinja čine zdrave zimske pčele

Ljetni i jesenski tretmani protiv varoe usmjereni su na to da vaše zimske pčele budu zdrave i dovoljno dugovječne da bi preživjele zimu.

Suzbijanje varoe ljeti održava pčele njegovateljice u dobrom zdravlju, tako da mogu obavljati svoj posao uzgoja zimskih pčela bez prenošenja virusnih bolesti. Jesenski tretmani protiv varoe namijenjeni su zaštiti mladih zimskih pčela od problema povezanih s grinjama koji nastaju zbog zanošenja na kraju sezone. Sve dok u košnici još ima legla, najbolje čemu se možete nadati je da broj grinja varoe bude dovoljno nizak da se održi razina smanjenja štete.

Na samom pragu zime počinje posebno razdoblje: prirodna pauza legla, kada u većini područja pčele nakratko prestaju uzgajati leglo. Budući da varoa grinje trebaju pčelinje leglo za nastavak reprodukcije (a grinje su zaštićene od učinaka većine tretmana dok se razmnožavaju ispod pokrova legla), rana zimska pauza legla čini ih neobično ranjivima na tretmane.

Možete iskoristiti ovu povećanu ranjivost tokom pauze oko legla kada će sve grinje u košnici biti u ranjivom stanju. Nekoliko sedmica cijela populacija grinja u vašim košnicama je bespomoćna protiv tretmana koji brzo djeluje.

Postoji jedna vrsta tretmana koja će ubiti više od 95% svih foretskih grinja jednim udarcem: oksalna kiselina. Jednokratno tretiranje oksalnom kiselinom, kada u košnici nema legla, može u biti vratiti razine grinja gotovo na nulu.

Tokom tog perioda, često je dovoljno hladno da se pčele zatvore, ako ne u svoje košnice, barem u vlastita dvorišta. Pčele se neće morati nositi s priljevom novih grinja koje dolaze iz netretiranih zajednica. Nakon što se očiste, ostaju očišćene sve dok ponovno ne počnu letovi u potrazi za hranom, što se dešava mjesecima kasnije. Zato je vrlo važno i u pčelarstvu ko nam je komšija.

To znači da kada se leglo nastavi uzgajati u januaru i početkom veljače (ovisno o tome gdje se nalazite), nove pčele će se uzgajati u okruženju gotovo bez grinja, zaštićene od fizičkih oštećenja uzrokovanih parazitiranjem i sigurnih od bolesti koje grinje izazivaju. Nove pčele narednog proljeća su te koje će sljedeće godine podići vaše jake proizvodne zajednice.

Na neki način, tretman oksalnom kiselinom u razdoblju bez legla može biti najvažniji u cijeloj godini. Postavlja temelje za poboljšanu kontrolu grinja koja se prenosi do sljedećeg proljeća, jer smanjuje šansu razmnožavanja grinja do apsolutnog minimuma. To također znači da nećete imati probleme s grinjama iz prethodne godine. Najbliže ste dobrom novom početku koliko možete biti.

Dakle, ako želite da vaše pčele započnu Novu godinu kao da je 1986. (godina prije nego što se Varroa destructor prvi put pojavila u SAD-u), razmislite o tome da im date tretman oksalnom kiselinom u jesenskom periodu.

Dakle, kada je tačno ova pauza za leglo?

To je teško pitanje, jer se razlikuje od područja do područja. Čini se da se u južnim područjima događa nešto ranije nego u sjevernijim područjima. (Pčele se također brže vraćaju leglu u toplijim područjima.) Čini se da varira i od godine do godine. Osim otvaranja košnice i pregleda košnice (rizična ideja tako kasno u sezoni), najbolje je raspitati se u blizini. Da biste izvukli najveću korist, ako možete pričekati da bude dovoljno hladno da se pčele redovno zadržavaju u košnici, dobit ćete povećanu zaštitu zbog njihove privremene izolacije. Od ova dva faktora, dajte veću važnost nedostatku legla nego izolaciji, jer nedostatak legla čini ovaj tretman tako učinkovitim.

Tekst preuzet sa : Using Oxalic Acid in Late Fall for Better Mite Control Next Year (betterbee.com)

Usporedba životnog vijeka pčela : 1970e i danas

Tijekom 1970-ih, laboratorijske medonosne pčele općenito su živjele više od mjesec dana. Sada, prema novom istraživanju objavljenom u Scientific Reports, pčele u laboratoriju žive samo oko dvije sedmice.

Prepolovljenje životnog vijeka insekata (s 34,3 dana 1970-ih na 17,7 dana 2010-ih) samo je najnoviji zabrinjavajući znak za vrstu koja igra ključnu ulogu u našem okolišu. Medonosne pčele pretrpjele su velike gubitke populacije posljednjih godina. 

Kada su naučnici modelirali učinak današnjeg kraćeg životnog vijeka, rezultati su pokazali povećan gubitak kolonija i trend smanjene proizvodnje meda koje su uočili američki pčelari u posljednjim dekadama…

Izmjena društava prihvaćen je faktor u pčelarstvu, budući da pčelinje zajednice prirodno stare i odumiru. Ali tijekom protekle dekade, američki pčelari primijetili su i govorili o visokim stopama gubitaka, što je značilo da moraju zamijeniti više društava. U nastojanju da shvate zašto, istraživači su se usredotočili na okolišne stresore, bolesti, parazite, izloženost pesticidima i prehranu.

Ovo je prva studija koja pokazuje sveukupno smanjenje životnog vijeka medonosne pčele potencijalno neovisno o okolišnim stresorima, nagovještavajući da bi genetika mogla utjecati na trendove koji se pojavljuju u industriji pčelarstva. Studija je objavljena 14. novembra 2022. u časopisu Scientific Reports.

“Izoliramo pčele iz zajednice neposredno prije nego što postanu odrasle, tako da sve što skraćuje njihov životni vijek događa se prije tog momenta”, rekao je Anthony Nearman, dr.sc. student Odjela za entomologiju i glavni autor studije. “Ovo uvodi ideju da postoji genetska komponenta. Ako je ova hipoteza tačna, ona također ukazuje na moguće rješenje. Ako možemo izolirati neke genetske faktore, onda možda možemo uzgajati dugovječnije medonosne pčele.”

Nearman je prvi primijetio smanjenje životnog vijeka dok je provodio studiju s profesorom entomologije Dennisom van Engelsdorpom o standardiziranim protokolima za uzgoj odraslih pčela u laboratoriju. Ponavljajući ranije studije, istraživači su prikupili kukuljice iz košnica medonosnih pčela kada su kukuljice bile u roku od 24 sata od izlaska iz voštanih ćelija u kojima su uzgajane. Sakupljene pčele završile su s rastom u inkubatoru, a zatim su držane kao odrasle jedinke u posebnim kavezima.

Nearman je procjenjivao učinak dodavanja šećerne vode u ishranu pčela u kavezima običnom vodom kako bi se bolje oponašali prirodni uvjeti kada je primijetio da je, bez obzira na prehranu, prosječni životni vijek njegovih pčela u kavezima ponovo bio upola kraći od onih u kaveznim pčelama u sličnim eksperimentima 1970-ih. . (17,7 dana danas naspram 34,3 dana 1970-ih.) To je potaknulo dublji pregled objavljenih laboratorijskih studija u proteklih 50 godina.

“Kada sam nacrtao životni vijek kroz vrijeme, shvatio sam, zapravo se događa ogroman vremenski učinak”, rekao je Nearman. “Standardizirani protokoli za uzgoj medonosnih pčela u laboratoriju nisu stvarno formalizirani sve do 2000-ih, pa biste pomislili da će životni vijek biti duži ili nepromijenjen, jer smo sve bolji u tome, zar ne? Umjesto toga, vidjeli smo udvostručenje stope smrtnosti.”

Iako se laboratorijsko okruženje uveliko razlikuje od društva, historijski zapisi o pčelama držanim u laboratoriju sugerišu sličan životni vijek kao društvo pčela, a naučnici općenito pretpostavljaju da će izolirani čimbenici koji skraćuju životni vijek u jednom okolišu također skratiti životni vijek u drugom. Prethodne studije također su pokazale da u stvarnom svijetu kraći životni vijek medonosnih pčela odgovara kraćem vremenu traženja hrane i manjoj proizvodnji meda. Ovo je prva studija koja je povezala te faktore sa stopom izmjene društava.

Kada je tim modelirao učinak smanjenja životnog vijeka od 50% na pčelarstvo, gdje se izgubljene zajednice zamjenjuju godišnje, rezultirajuće stope gubitka bile su oko 33%. To je vrlo slično prosječnim stopama gubitaka tijekom zime i godišnjim gubicima od 30% i 40% koje su prijavili pčelari u posljednjih 14 godina.

Nearman i van Engelsdorp primijetili su da bi njihove pčele koje se drže u laboratoriju mogle doživjeti neku vrstu virusne kontaminacije ili izloženosti pesticidima tijekom stadija larve, kada leže u košnici i pčele radilice ih hrane. Međutim, pčele nisu pokazale očite simptome te izloženosti, a genetska komponenta dugovječnosti dokazana je kod drugih insekata kao što su vinske mušice.

Sljedeći koraci za istraživače bit će usporedba trendova u životnom vijeku medonosnih pčela u SAD-u i drugim zemljama. Ako pronađu razlike u dugovječnosti, mogu izolirati i usporediti potencijalne faktore koji doprinose kao što su genetika, upotreba pesticida i prisutnost virusa u lokalnim pčelama.

Akademski članak preuzet i preveden sa : Maryland Today | Today’s Honey Bees Live Only Half as Long as ’70s… (umd.edu)

Varroa destructor

Donosimo vam tekst o istraživanju provedenom na više mjesta na Australijskom kontinentu.

Pored mnogih izazova s kojim se suočavaju Evropske medne pčele, parazit Varroa destructor (u daljem tekstu V. destructor) je faktor koji čini najviše štete u današnjici. Varroa destructor je ektoparazitska štetočina koja je izvorno pronađena na azijskoj medonosnoj pčeli Apis cerana, ali je promijenila domaćina te parazitirala A. mellifera tijekom ranih 1960-ih, i nakon toga kolonizirala europske populacije sredinom 1970-ih.

V. destructor uzrokuje štetu sisanjem hemolimfe svog domaćina, što slabi pčelu i olakšava prijenos više virusa i drugih bolesti (Boecking i Spivak 1999; Le Conte i sur. 2010; Rosenkranz i sur. 2010).

Prikaz kako varroa napada pčelinje tijelo

Kako bi kontrolisali širenje Varroa destructora, pčelari su u početku koristili akaricide kao što su bromopropilat, kumafos, diazinon, amitraz, flumetrin i fluvalinat. Međutim, s vremenom je V. destructor razvila otpornost na mnoge od ovih pesticida. Nadalje, pokazalo se da ove hemikalije povećavaju događaje superscencije (rana zamjena matice) (kumafos i fluvalinat), povećavaju smrtnost kod odraslih jedinki i legla (kumafos kod odraslih jedinki i fluvalinat kod legla i odraslih jedinki), smanjuju tjelesnu težinu matica (fluvalinat), smanjuju količinu lipida, ugljikohidrata i proteina u hemolimfi radilica (amitraz i flumetrin). Nadalje, ti se tretmani često nakupljaju u vosku, što može utjecati na razvoj pčelinje larve i otpornost na miticide u narednim godinama. Iz tih razloga, alternativni tretmani poput eteričnih ulja i organskih kiselina postali su sve privlačniji pčelarskoj industriji.

Varroa destructor pod mikroskopom

Timol je akaricid koji je brzo porastao u popularnosti i sada je jedna od glavnih metoda kontrole V. destructor. Također je sugerisano da timol pomaže u kontroli širenja krečnog legla i drugih parazita. Učinci timola na grinje i medonosne pčele i dalje su nedovoljno istraženi, ali se vjeruje da timol utječe na te organizme ometajući GABA receptore i pojačavajući GABA odgovore. Varroa mijenja aktivnost 455 gena, uključujući gene važne za GABA-receptor i lučenje serotonina. Timol može odbiti medonosne pčele, stupiti u interakciju s olfaktornim receptorima. Ovo sugerira da bi timol mogao negativno utjecati na higijensko ponašanje kod medonosnih pčela ometanjem hemijskih procesa koji pokreću uklanjanje bolesnog ili mrtvog legla i odraslih jedinki. Nekoliko olfaktornih signala koji ukazuju na zdravlje i/ili propadanje ličinki uključeno je u uklanjanje mrtvih odraslih jedinki i ličinki, ali ne postoje objavljena istraživanja koja istražuju učinke primjene timola na higijenske reakcije. Imperativ je da razumijemo kako timol može utjecati na ponašanje medonosnih pčela jer je dobro higijensko ponašanje važan bihevioralni mehanizam otpornosti protiv V. destructor i drugih patogena.

Australija je trenutačno jedini kontinent ne kojem ne postoje slučajevi V. destructora, pružajući tako rijetku i vjerojatno kratku priliku za provođenje eksperimenata povezanih s tretmanima V. destructor bez grinja i drugih ostataka miticida, koji mogu utjecati na eksperimentalne podatke. Također je bitno da razumijemo učinke tretmana miticidima i odredimo metode kontrole grinja koje imaju minimalan utjecaj na ponašanje pčela u slučaju invazije V. destructor. Ovdje smo počeli procjenu utjecaja Apiguarda®, komercijalne formulacije timola, na europske medonosne pčele kako bismo utvrdili njegov utjecaj na otvaranje i uklanjanje mrtvog legla te na uklanjanje mrtvih pčela. Ponovili smo ovaj eksperiment u dva različita australska okruženja: u Hobartu (Tasmanija) i Richmondu (Novi Južni Wales). Ovi rezultati pružaju nove uvide u utjecaje timola na ponašanje europskih medonosnih pčela i pomoći će u odabiru i dizajnu odgovarajućih tretmana V. destructor.

Proučavali smo efekat timola na tri osnovna higijenska ponašanja kod Evropskih pčela. Pčele tretirane timolom otklopile su više ćelija nakon prvog tretmana timolom, ali ne i nakon što je drugi tretman započet. Pčele tretirane timolom uklonile su više mrtvog legla nego pčele kontrolne grupe nakon što je timol apliciran prvi put u Sydneyu, ali ne i nakon što je zamijenjen. Pčele tretirane timolom nisu bile značajno brže tijekom uklanjanja mrtvih odraslih pčela i nisu uklonile mnogo više mrtvih pčela iz košnice. Razlika između efekta timola na uklanjanje i otklopljavanje mrtvog legla i uklanjanje mrtvih odraslih pčela sugerira da bi ova ponašanja mogla biti neovisna ili potaknuta nečim drugim.

Pokazano je da je timol poboljšao skidanje čepova/zatvarača i uklanjanje legla koje je ubijeno smrzavanjem. Međutim, također je pokazano da timol smanjuje globalne količine legla u grupama medonosnih pčela i uzrokuje uklanjanje živog legla u blizini spremnika s timolom. Sve u svemu, ovi rezultati pokazuju da bi timol mogao uzrokovati povećano uklanjanje legla bez obzira na njihovo zdravstveno stanje. Negativni učinci tretmana miticidima na razvoj legla također su prijavljeni za tretmane mravljom kiselinom.

Učinci timola nisu bili dosljedni tijekom cijelog trajanja tretmana, a uklanjanje zatvarača/čepova poboljšano je samo u drugoj analizi u Sydneyu i u drugoj analizi u Hobartu. Slično tome, timol je povećao uklanjanje mrtvog legla u drugoj analizi na obje lokacije, ali ne i u trećoj analizi. Ovo sugeriše da se učinci liječenja timolom na pčele mijenjaju tijekom liječenja. Prethodno je predloženo da se pčele mogu naviknuti na timol, što bi moglo objasniti zašto je timol imao ograničene učinke na higijensko ponašanje pčela u trećoj analizi. 

Učinkovitost pčela prilikom izvođenja ova tri higijenska ponašanja nije bila dosljedna među lokacijama. Pčele su uklonile više mrtvih odraslih pčela u Hobartu nego u Sydneyu, ali su uklonile više mrtvih legla u Sydneyu nego u Hobartu. Košnice korištene u Hobartu i Sydneyu razlikovale su se po obliku i volumenu, a radilice i leglo možda su bili izloženi različitim koncentracijama timola, što bi moglo objasniti ove varijacije. Velike ekološke razlike između Hobarta i Sydneya, koji su odvojeni hiljadu kilometara i 9° geografske širine, mogle bi objasniti ove rezultate. Prethodno je zaključeno da interakcije s okolišem objašnjavaju nedosljedne rezultate u studijama koje pokazuju i pozitivne i negativne učinke pesticida, uključujući timol, na grupe medonosnih pčela. Genetske razlike također mogu modifikovati higijenske razine i učinak timola na higijensko ponašanje između lokacija. Matice korištene u Hobartu dobivene su od komercijalnog uzgajivača matica, ali porijeklo matica korištenih u Sydneyu nije poznato. Pasmine medonosnih pčela koje su učinkovitije u izvođenju određenih higijenskih ponašanja mogu se umjetno odabrati, ali prema našim saznanjima niti jedan od sojeva medonosnih pčela korištenih u ovom eksperimentu nije odabran za higijensko ponašanje. Niti jedna od košnica korištenih u ovom eksperimentu nije uklonila više od 95% mrtvog legla prije tretmana timolom, što je uobičajeni prag koji se koristi za klasificiranje zajednica kao higijenskih. Stoga su potrebna daljnja istraživanja kako bi se istražilo kako timol utječe na higijensko ponašanje kod higijenskih sojeva medonosnih pčela.

Matica

Ovi rezultati naglašavaju potrebu ponavljanja eksperimenata u različitim okruženjima da bi se procijenio učinak pesticida na medonosne pčele. Dalje studije trebale bi se usredotočiti na to kako opaženi utjecaj timola i drugih miticida na ponašanje pčela utječe na preživljavanje i produktivnost čitavih zajednica pčela.

ISTRAŽIVANJA O UTJECAJU RAZLIČITIH NAČINA PRIHRANE PČELA

IZVOR : Mirjanic etal 2013 Apimodia paper.pdf (dropbox.com)

Pčele svoje potrebe zadovoljavaju iz četiri prirodna izvora: nektara, meda, peluda i vode. Ovi izvori hrane nalaze se u okolišu, ovisno o dobu godine i trenutnim klimatskim uslovima. Sposobnost brzog i lahkog otkrivanja novih izvora hrane značajno utječe na produktivnost pčelinjih zajednica, što je jedan od važnih parametara odabira u pčelarstvu. Ponekad postoji potreba za prihranom pčela, što se priprema se na dva načina: kiselinskom ili enzimskom hidrolizom šećera. Oba hemijska procesa imaju za cilj manje fizičkog iscrpljivanja medonosnih pčela, s obzirom da za vlastite potrebe koristi samo jednostavne šećere. Preostala kiselina u hrani za pčele uzrokuje cijepanje crijevnog trakta, uz značajno skraćivanje života pčela. Enzimska hidroliza šećera, uz pomoć enzima sukraza-invertaze, sporiji je proces, ali bez štetnih učinaka na

život pčela. Pivski kvasac i sladovina, osim što u svom sastavu imaju enzime saharaze invertaze, bogat su izvor proteina, vitamina i minerala za pčele. Ove komponente su vrlo važan obrok za prihranu pčelinjeg legla, posebno u rano proljetno doba, u vrijeme intenzivnog razvoja pčelinjih zajednica.

Prisutnost svježeg nektara i peludi pozitivno utječe na razvoj pčelinjeg legla, a time i na snagu pčelinjih zajednica i njihovu kasniju produktivnost. Kvaliteta meda, kao glavnog sastojka pčelinjeg obroka, ovisna je o porijeklu nektara, pa su prema Komarovu (1993) najveće količine glukoze i fruktoze (75%) i nitrogenovih spojeva (0,97%) pronađeni su u livadskom medu, dok je medljika (honeydew) bila najbogatija mineralima (0,96%).

Kaftanoğlu i sur. (2010.) utvrdili su takav način ishrane mladih larvi, u smislu sadržaja šećera, određuje daljnju ishranu odraslih pčela i njihovu osjetljivost na razinu jednostavnih šećera u hrani. Prema Crailsheimu (2010), razina proteina u prehrani jedno je od glavnih limitirajućih faktora za razvoj pčelinjih zajednica, u smislu sposobnosti letenja, životnog vijeka i njege pčelinjeg legla. Pelud je glavni izvor proteina i sadrži esencijalne kiseline neophodne za pčelinji razvoj, sa sposobnošću smanjenja njihove osjetljivosti na parazite i patogene (Alaux et al., 2010). Crailsheim (2012) je otkrio da se izvori hrane razlikuju po sastavu i obliku (tekuće ili čvrsto) uzimaju od pčela različite starosti, te da iste pčele ne uzimaju više nego jedan oblik hrane. Zbog nedostatka odgovarajuće prirodne hrane za osiguranje zimske zalihe hrane, pčelari koriste prihranu pčela, uglavnom šećerni sirup (Dustmann i dr. dr., 1997.; Ivanov, 1995). Šećerni sirup može se obogatiti dodacima koji sadrže razne koncentracije bjelančevina, vitamina, minerala, hormona i drugih tvari neophodnih za rast i razvoj pčela (Currie, 1999, Schmidt, 1999).

Najznačajnija smrtnost pčela utvrđena je tijekom jesenske prihrane kiselim hidroliziranim invertnim sirupom. Smrt pčela može biti uzrokovana trovanjem želuca ili cijepanjem probavnog trakta (Jachimowicz i sur., 1975.). Severson et al., (1984) zaključuju da najbolji izvor ugljikohidrata za prihranu pčela bio je visok sadržaj fruktoze u sirup HFCS 55, što su potvrdili Rogers i sur., (1992). Prema njihovim rezultatima, ove sirupe treba razrijediti na oko 65% čvrstog sadržaja. Mladenović i sur. (2002) predlažu da različite vrste hrane za pčele različito utječu na razvoj pčelinjeg društva.

Suhi pivski kvasac u prehrani značajno utječe na životni vijek pčela. Prema Taranovu (2001), pčele hranjene suhim pivskim kvascem živjele su 38, a one hranjene šećernim sirupom 22,5 dana u prosjeku. Na dužinu života pčela utječe količina polena u košnici (Rjamova, 1979). Dakle, količina polena u košnici do 4,4 kg može dva puta povećati životni vijek pčela. Za razvoj larve utroši se 145 mg polena, odnosno to je 1,5 kg polena za 10 000 pčela (Peng i sur., 1979.). Visokokvalitetna zamjena za pelud može u potpunosti zamijeniti prirodni pčelinji polen u prehrani, osobito u usporedbi s osiromašenim šećerom sirupom, bez proteinskih dodataka (Brodschneider i sur., 2012). Na primjer, pivski kvasac može biti značajan za razvoj pčelinjeg društva i povećava prinos meda, ako se doda određena količina praha žumanca i sojinog brašna i dobro se izmiješa (Abdellatifi sur., 1971). Prema Sahinleru i sur. (2003), kombinacija zamjene za polen i šećerni sirup pokazao je najbolje rezultate. Crailsheim i sur. (2006) utvrdili su da proteini u umjetnim hranama za pčele prelazi ne samo u rezerve hrane u košnici za trenutnu upotrebu, već također imaju tzv. tehničku sposobnost za ishranu larvi i kompletnog pčelinjeg legla, do trenutka iskorištavanja.

Utjecaj različite prihrane na probavni trakt pčela

Iz uginulih pčela izvađeno je središnje crijevo sa sadržajem, izvršene su histološke preparacije i zatim mikroskopski analizirani. Crijeva su potopljena u 4% otopini formaldehida, umetnuta u parafinske blokove i izrezane mikrotomom na rezove debljine 6 do 7 μm.

Deparafinirani rezovi su obojeni u opće morfološke svrhe prema Hemalaon-Eozinic metodi. Dobiveni rezultati uspoređeni su međusobno, te s normalnom strukturom probavnog trakta medonosne pčele.

Slika 1. Srednje crijevo pčele hranjene bagremom 

Prilikom prihranjivanja pčela medom (bagremovim medom) utvrđeno je:

– Epitelne stanice srednjeg crijeva prilično su konzervativne, vrhovi su tijesno prilijepljeni jedni uz druge;

– Crijevni sadržaj je dosta homogen i kompaktan, te priliježe uz crijevni epitel, što nam sugeriše dobro probavljenu hranu.

Slika 2. Srednje crijevo pčele hranjeno šećernim sirupom

Prilikom prihranjivanja šećernim sirupom ustanovili smo:

– Zid srednjeg crijeva je pravilno naboran i u bliskom kontaktu sa crijevnim sadržajem;

– Epitelne stanice su pravilno raspoređene na unutarnjem zidu crijeva;

– Nađen je blago oštećen gornji sloj epitelnih stanica, koji nije prisutan u svim stanicama;

– Crijevni sadržaj nije homogen, prilično slabe konzistencije i leži direktno na crijevnom epitelu.

Slika 3. srednje crijevo pčele hranjene šećernim sirupom i kvaščem

Utjecaj šećernog sirupa s kvaščem ogleda se u sljedećem:

– Pojavi razmaka između pojedinih epitelnih stanica i njihova nehomogena distribucija,

– Kao i kod prihrane sa šećernim sirupom, crijevni sadržaj nije homogen, prilično slabe konzistencije i nalazi se neposredno uz crijevni epitel.

Slika 4. Srednje crijevo pčele hranjene šećernim sirupom i pivskom sladovinom

Hranjenje šećernim sirupom s pivskom sladovinom dovelo je do sljedećeg:

– Prilično rastegnut zid crijeva, što dovodi do smanjene apsorpcijske sposobnosti;

– Epitelne ćelije imaju oštećenu površinu, dok jedan dio viših epitelnih ćelija nedostaje, sa samo regeneracijskim ćelijama vidljivim;

– Crijevni sadržaj nije homogen, prilično slabe konzistencije i leži izravno na crijevnom epitelu.

Slika 5. Srednje crijevo pčele hranjene šećernim sirupom, kvaščem i pivskom sladovinom

Prilikom prihranjivanja pčela šećernim sirupom i kombinacijom kvasca i sladovine ustanovili smo:

– Zid crijeva dosta rastegnut i stanjen, pa se poprečne bore ne vide;

– Izraženo oštećenje epitelnih stanica, s njihovim nedostatkom u crijevnom epitelu (zbog štete). Crijevni sadržaj dijelom leži na epitelu, dobrim dijelom sadržaj stisnut u središtu crijeva.

Slika 6. Srednje crijevo pčele hranjene kiselinskim invertnim sirupom

  U središnjem crijevu pčela hranjenih kiselim invertnim sirupom (vinska kiselina) pronašli smo sljedeće:

– Epitelne stanice su široko razdvojene, između njih postoji niz praznina koje se manifestiraju u obliku dubokih udubljenja u epitelu;

– Gotovo potpuno oštećene stanice visokog stupastog epitela, samo regeneracijske ćelije nepromijenjene. Sadržaj u lumenu crijeva prilično je slabe konzistencije, s vidljivim dijelovima rasformirane ćelije.

Slika 7. Srednje crijevo pčele hranjene kiselim invertnim sirupom i kvaščem

Kod pčela hranjenih kiselim invertnim sirupom i kvaščem pronašli smo:

– Slična situacija kao i kod kiselog sirupa, ali sa bolje očuvanim epitelnim stanicama;

– postoje mjesta uočenih oštećenja, koja pokrivaju gotovo cijelu dubinu epitela.

Slika 8. Srednje crijevo pčele hranjene s kiselim invertnim sirupom i pivskom sladovinom

 Kod pčela hranjenih kiselim invertnim sirupom i pivskom sladovinom pronašli smo:

– Cijeli sloj epitelnih stanica poprilično duboko oštećen, ali dosta kompaktan i u kontaktu s crijevnim sadržajem;

– Crijevni sadržaj je prilično homogene konzistencije.

Slika 9. Srednje crijevo pčele hranjene s kiselim invertnim sirupom, kvaščem i pivskom sladovinom

Kod pčela hranjenih kiselim invertnim sirupom i kombinacijom kvasca i sladovine pronašli smo:

– Oko 2/3 ukupne debljine epitelnog sloja je oštećeno na cijeloj površini lumena;

– Oštećeni epitel je dosta kompaktan i homogenog sastava.

Slika 10. Srednje crijevo pčele hranjene enzimskim invertnim sirupom

 Kod pčela hranjenih enzimskim invertnim sirupom pronašli smo:

– Visoke stupčaste epitelne stanice pravilno poredane na bazalnoj membrani poprečno valovite cijevi srednjeg crijeva;

– Djelomično odvojena peritrofna membrana koja obavija malo rastresiti sadržaj crijeva.

Slika 11. Srednje crijevo pčele hranjene enzimskim invertnim sirupom i kvaščem

  Kod pčela hranjenih enzimskim invertnim sirupom s dodatkom kvasca našli smo sljedeće:

– Lagano oštećene površinske epitelne stanice i time izražene regenerativne stanice;

– Sadržaj u lumenu crijeva je trošne strukture i neposredno uz srednje crijevo epitela.

Slika 12. Srednje crijevo pčele hranjene enzimskim inv. sirupom i pivskom sladovinom

Kod pčela hranjenih enzimskim invertnim sirupom i pivskom sladovinom pronašli smo:

– na nekim mjestima epitelni sloj je potpuno oštećen do mišićnog sloja;

– rezidualni sadržaj u lumenu crijeva, organiziran u homogene nakupine.

Slika 13. Srednje crijevo pčele hranjene enzimskim invertnim sirupom, kvaščem i pivskom sladovinom

Kod pčela hranjenih enzimskim invertnim sirupom, kvascem i pivskom sladovinom pronašli smo sljedeće:

– Epitelne stanice su duboko oštećene po cijeloj površini crijeva;

– Crijevni sadržaj se sabija u homogenu masu unutar lumena crijeva, sa jednim homogenim slojem, teško probavljivim za pčele.

U sklopu našeg istraživanja posmatrali smo utjecaj različitih vrsta prihrane na životni vijek pčela. Nijedan drugi faktor (broj pčela u kavezu, klimatski uvjeti itd.) nije imao značajan utjecaj na ovaj parametar pčelinjeg tijela.

Tablica 1. Prosječni životni vijek pčela (dani) u tri godine istraživanja

Tablica 1. Prosječni životni vijek pčela (dani) u tri godine istraživanja

Najkraći prosječni životni vijek imale su zimske pčele hranjene kiselim invertnim sirupom (12.15 dana), dok su najduži život imale zimske pčele hranjene medom (27,05 dana). Prirodna hrana za pčele, med, je pozitivno utjecao na životni vijek pčela, dok je kisela invertirana hrana značajno skratila život pčela. To potvrđuje i slika probavnog trakta pčela, što je prikazano u prethodnom dijelu. Primjena vinske kiseline za proces inverzije složenih šećera je dovela do cijepanja tankog crijeva pčela i ranijeg uginuća pčela. 

Dodatak pivskog kvasca i sladovine na primarne izvore umjetne hrane imao je različite učinke na dugovječnost pčela. Njihovo dodavanje u šećerni sirup dovelo je do skraćivanja života pčela u prosjeku od 1,40 do 5,06 dana. Slični rezultati nađeni su s njihovim dodatkom enzimskim sirupima, gdje su dodaci kvasca i sladovine doveli do skraćivanja prosječnog života pčela sa 4,53 na 6,64 dana. S druge strane, dodavanje pomenutih aditiva u kiseli invertni sirup dovelo je do produženog prosjeka života pčela od 4,60 do 5,72 dana.

Na temelju naših istraživanja može se zaključiti da prihrana različitim izvorima hrane ima različit utjecaj na probavni trakt pčela, posebno u epitelnom sloju srednjeg crijeva. Prirodni izvor hrane za pčele – med nije imao štetnog djelovanja na srednje crijevo epitelnog sloja, a crijevni sadržaj bio je potpuno pričvršćen za ovaj sloj, koji dovodi do kvalitetne probave i maksimalne resorpcije hranjivih tvari. Dobiveni su slični rezultati kod prihranjivanja pčela šećernim sirupom i enzimskim invertnim sirupom bez dodatka kvasca i pivske sladovine. To znači da svaki dodatak kvasca i slada dovodi do oštećenja srednjeg crijeva epitelnog sloja, a razlike nastaju ovisno o izvoru hrane. 

Najozbiljnije oštećenje epitelnog sloja pronađeno je u srednjem crijevu pčela hranjenih kiselim invertnim sirupom (u svim ispitivanim kombinacijama).

 Što se tiče utjecaja različite hrane na dužinu života pčela, može se zaključiti da prihrana medom, enzimskim sirupom od invertnog šećera ima pozitivan učinak na životni vijek pčela, dok se dodatkom pivskog kvasca i sladovine skraćuje život pčela pa preporuka je koristiti dohranu bez njih, te da upotrebu tih dodataka treba više prakticirati tijekom ostalih godišnjih doba, pogotovo ako nema prirodnog polena.

PRIJEVOD : N.